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　　在對生物細(xì)胞的測序?qū)嶒炛校绾潍@得高質(zhì)量的單細(xì)胞懸浮液是成功的關(guān)鍵，但復(fù)雜多樣的組織類型卻會給懸浮液的制備帶來挑戰(zhàn)。那這該如何從細(xì)胞組織樣本中獲得高質(zhì)量的單細(xì)胞懸液呢？

　　單細(xì)胞懸液制備儀測序技術(shù)可以在生物細(xì)胞層面進(jìn)行高分辨率的實驗分析，進(jìn)而可揭示單細(xì)胞的狀態(tài)和功能，避免了由傳統(tǒng)基因組技術(shù)平均信號產(chǎn)生的結(jié)果誤差；被廣泛應(yīng)用于腫瘤、發(fā)育、免疫、神經(jīng)科學(xué)、干細(xì)胞分化、大規(guī)模細(xì)胞圖譜構(gòu)建等行業(yè)研究領(lǐng)域。

　　為了確保后續(xù)的單細(xì)胞實驗?zāi)軌蝽樌M(jìn)行，因此需要嚴(yán)格的質(zhì)量去控制細(xì)胞懸液的制備；為了確保細(xì)胞樣品的活性，建議使用新鮮的細(xì)胞組織去制備細(xì)胞懸液。若是不能在取樣后直接進(jìn)行測試，可將組織樣本保存在4℃環(huán)境下的組織保存液中，在48小時內(nèi)對其進(jìn)行懸液消化。

　　在解離前可將組織剪切成碎塊，可增加酶與組織的接觸面積；在切割組織時，可以加入少量百分之10的細(xì)胞培養(yǎng)基，可避免組織細(xì)胞脫水。酶消化法主要是利用酶來去除細(xì)胞間質(zhì)，可使細(xì)胞脫落分散；由于不同組織的細(xì)胞間質(zhì)不同，所以需要選擇特定的酶和特定的消化時間。

　　在獲得單細(xì)胞懸浮液后，可根據(jù)質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn)對細(xì)胞的活性、結(jié)團(tuán)率、濃度、直徑分布等參數(shù)進(jìn)行質(zhì)量檢驗；如果這些參數(shù)的檢驗結(jié)果沒有達(dá)到預(yù)期，那對懸浮液的質(zhì)量應(yīng)根據(jù)具體情況進(jìn)行優(yōu)化。

　　若細(xì)胞活性較低，可通過去除死細(xì)胞來提高懸浮液的細(xì)胞活性；對于細(xì)胞的結(jié)團(tuán)率高是因為組織沒有完全消化或細(xì)胞釋放DNA，因此需要根據(jù)不同情況去調(diào)整消化條件、DNA優(yōu)化酶處理等措施。

　　綜上便是對有關(guān)生物細(xì)胞制備高質(zhì)量的單細(xì)胞懸浮液的操作應(yīng)用簡述，具體情況還需要根據(jù)實際實驗狀況進(jìn)行分析。